Durante el desarrollo de la presente tesis se han estudiado los eventos moleculares que ocurren en la cutícula pupal y en el pupario en las primeras etapas de la metamorfosis. Estos fenómenos se correlacionaron con eventos morfológicos estudiados simultáneamente por otros miembros del laboratorio (Rabossi et al., 1991; Rabossi 1991). De nuestros resultados se concluye que Ceratitis es un buen modelo experimental para el estudio de la expresión génica durante el desarrollo de los dípteros. Hasta la fecha, el animal experimental más frecuentemente utilizado es Drosophila melanogaster. Además de presentar interés por tratarse de una plaga cuya biología, bioquímica y genética han sido poco estudiadas (ver Introducción), Ceratitis presenta ciertas ventajas específicas respecto de otros modelos de laboratorio. El ciclo de vida de esta mosca presenta una duración mayor que el de Drosophila. A 23°C, entre el inicio de la pupariación y la emergencia, transcurren 4-4.5 días en Drosophila (Ashburner, 1989) y 12 días en Ceratitis (ver capítulo III, páginas 49-51). Los eventos morfológicos y de diferenciación bioquímica que tienen lugar durante la metamorfosis ocurren más lentamente en esta última, lo cual facilita su estudio. Tratándose además de animales de mayor tamaño (4 y 1.5 mm, respectivamente), resulta ideal para el empleo de ciertas técnicas tales como microinyección y disección. Parte de los resultados de esta tesis han sido publicados, o están en vías de publicación, en los siguientes trabajos: Boccaccio y Quesada, l989a; l989b; Rabossi et al., 1991; Boccaccio y Quesada, 1991; Boccaccio y Quesada, manuscrito en preparación. Se resumen a continuación los resultados alcanzados: a. Hemos demostrado la existencia de grupos diferentes de proteínas cuticulares en los diferentes estadíos del desarrollo de Ceratitis capitata. Estos grupos de proteínas son: las de primer y segundo estadío larval. las de tercer estadío larval (LCP); las pupales (PCP) y las de adulto (ACP) (ver figuras III.6 y III.7). Nuestros estudios en Ceratitis capitata (Boccaccio y Quesada, l989a) y los realizados por otros autores en otros dípteros (Chihara et al., 1982; Skelly y Howells, 1988; Souliotis et al., l988a) demuestran que en estos insectos las proteínas cuticulares son específicas de estadío. b. Contrariamente a lo descripto en otros insectos, hemos encontrado que la fracción proteica de la cutícula pupal de Ceratitis está constituida casi exclusivamente por un único polipéptido: PCG-100. En los otros estadíos estudiados, se encontró una mezcla de distintas proteínas (ver capítulo III). c. Se prepararon antisueros en conejos contra proteínas cuticulares. Se obtuvieron antisueros monoespecíficos anti-PCG-lOO, con los cuales se demostró que esta proteína es específica de estadío pupal y específica de tegumento (ver capítulo IV; Boccaccio y Quesada, manuscrito en preparación). d. Los estudios inmunológicos indicaron que la PCG-IOO de Ceratitis no comparte epítopes con otras proteínas cuticulares de ese insecto pero sí estaría emparentada con la PCP-82 de Drosophila melanogaster. Esta última es la proteína cuticular pupal de mayor peso molecular de Drosophila, es específica de estadío y también está glicosilada (Chihara et al., 1982; Silvert et al., 1984). e. Hemos estudiado el grado de glicosilación de las proteínas cuticulares de distintos estadíos de Ceratitis, encontrando que, analogamente a lo descripto para Drosophila melanogaster, las LCP están poco glicosiladas, en tanto que se detectaron glicoproteínas entre las PCP (ver capítulo VII; Boccaccio y Quesada, l989a). f. Se demostró la presencia de fucosa y manosa en la proteína cuticular pupal mayoritaria. PCG-lOO por radiomarcación in vivo con 2[^(3)H]-manosa y [^(14)C]-glucosa (ver capítulo VII). Hasta donde sabemos. sólo recientemente se demostró la presencia de fucosa en oligosacáridos de alta manosa en insectos (Guillén et al., 1989); pero el caso de PCG-lOO es el primero en que se describe una glicoproteína individual de insecto del tipo de alta manosa que, además, contiene fucosa. Algo similar ha sido descripto anteriormente en moluscos y plantas (van Kuik et al., 1985; Faye et al. 1989). g. Se estudió la biosíntesis de las proteínas cuticulares durante el estadío pupal de Ceratitis capitata mediante microinyección de [^(35)S]-metionina. Es la primera vez que se realiza in vivo, en condiciones estrictamente fisiológicas, el estudio de la síntesis de proteínas cuticulares de insecto (Boccaccio y Quesada, l989a). Las proteínas cuticulares pupales mostraron un período de síntesis breve y preciso, al comienzo del estadío pupal (ver capítulo VI). h. Se analizó la síntesis de la proteína cuticular pupal mayoritaria, PCG-lOO, y su presencia en la cutícula (páginas 124-131). Encontramos que esta proteína se sintetiza principalmente entre las 48 y 64 horas desde el comienzo de la pupariación y está presente durante todo el estadío pupal (hasta el sexto día) (Boccaccio y Quesada, l989a; Boccaccio y Quesada, manuscrito en preparación). Como se discute en los capítulos III y VI, la “desaparición” de esta proteína puede deberse a que se degrada o se esclerotiza. i. También por radiomarcación ln vivo, seguida de “Chase” ¡n vitro (capítulo VII) se estudió el proceso de síntesis, glicosilación, procesamiento, exportación y deposición en cutícula de PCG-lOO. Hasta donde sabemos, es la primera vez que se realiza este tipo de estudio para el caso de una proteína cuticular. Hemos encontrado que el proceso completo ocurre rápidamente, en unos lO minutos. No hemos detectado diferencias en el peso molecular aparente de PCG-lOO durante el pasaje por el retículo y aparato de Golgi. Esto sería indicativo de que no se agregan a PCG-lOO largas cadenas oligosacarídicas, en concordancia con los experimentos que realizamos para caracterizar los oligosacáridos unidos a esta proteína. Tampoco encontramos diferencias significativas de peso molecular entre la(s) especie(s) intracelular(es) de esta proteína y la depositada en cutícula. j. Hemos detectado la existencia de proteínas que aparentemente se incorporarían al pupario durante su formación. Estos estudios se hicieron en colaboración con Pablo Wappner (Rabossi et al., 1991). Es la primera vez que se describe este fenómeno, para el cual existen varias posibles explicaciones (ver capítulo VIII). k. Hemos estudiado la síntesis de la más abundante de estas proteínas, la PMP-26, por radiomarcación in vivo con [^(35)S]-metionina. Aparentemente, se sintetizaría durante la etapa pre-pupal (16-30 horas) y se depositaría en el pupario bastante después, hacia las 46-48 horas. El hecho de que su incorporación al pupario se produce masivamente y bastante después de su síntesis, sugiere que debe existir un mecanismo de acumulación (vesículas?) y que la exportación y/o deposición estarían estrictamente controladas en el tiempo. l. Se han realizado estudios comparados a nivel de ácidos nucleicos, intentando detectar secuencias homológas entre genes de proteínas cuticulares de Drosophila melanogaster y de Ceratitis capitata. Se iniciaron pasos experimentales que posibilitarán el clonado del gen codificante para PCG-lOO.